Актуальность. Липосомы известны науке с 1960-х годов XX века и сохраняют свою актуальность в качестве систем доставки активных фармацевтических субстанций (АФС). Липосомальные системы доставки активно применяются в технологии лекарственных форм с антибиотиками и гормональными средствами, однако противовирусные препараты также нуждаются в особых системах доставки, способных повысить их биодоступность. Одним из показателей, определяющих качество липосом является эффективность инкапсуляции (ЭИ), которая зависит от множества факторов, в том числе от состава липидной фазы. Сравнение лецитинов различного происхождения представляет интерес как этап предварительного выбора липидной основы. Цель. Получение лабораторных образцов липосомальной формы риамиловира и определение эффективности инкапсулирования риамиловира в зависимости от используемого лецитина. Материалы и методы. Липосомы получали методом гидратации липидной пленки с последующей ультразвуковой обработкой. В качестве липидной основы использовали соевый и подсолнечный лецитины; пленку гидратировали водно-спиртовым раствором риамиловира с концентрацией 10 ммоль/л. После центрифугирования свободный риамиловир в супернатанте определяли методом УФ-спектрофотометрии при 365 нм по калибровочной зависимости. Жирнокислотный состав образцов лецитина анализировали методом газовой хроматографии с пламенно-ионизационным детектированием после получения метиловых эфиров жирных кислот. Спектрофотометрические измерения выполняли в трех аналитических повторах. Результаты и обсуждения. В ходе эксперимента получены образцы липосомальной формы риамиловира на основе соевого и подсолнечного лецитина. Эффективность инкапсулирования АФС в липосомы, полученные из соевого лецитина, составила 59,94%, а из подсолнечного лецитина – 82,28%. Для установления возможной причины данных различий проведен хроматографический анализ проб лецитинов. В ходе идентификации летучих метиловых эфиров жирных кислот, входящих в состав различных лецитинов, было установлено, что в соевый лецитин, в отличие от подсолнечного, содержит 6,6% непредельной линоленовой кислоты. Значение ЭИ соответствует пассивной инкапсуляции гидрофильных соединений, однако количественные выводы ограничены калибровкой (R² = 0,9478). Для повышения надежности методики требуется расширение концентрационных уровней и оценка валидационных характеристик. Центрифугирование в текущем виде не гарантирует полного отделения наноразмерных везикул, что диктует необходимость применения диализа или ультрафильтрации. Выявленные различия жирнокислотного профиля лецитинов, особенно наличие линоленовой кислоты в соевом образце, могут объяснять снижение ЭИ за счет повышения текучести мембран. Выводы. Эффективность инкапсулирования АФС в липосомы, полученные из подсолнечного лецитина, превышает аналогичный показатель для липосом из соевого лецитина на 22,3%. Одной из причин низкой эффективности инкапсуляции может являться ликидж – утечка действующего вещества из полости везикул, ввиду различной подвижности мембраны липосом.